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今天將為大家介紹的是手工細胞計數法。因為在細胞培養技術(shù)中,細胞計數應是一項基本功,對于標準化培養條件以及需要精確定量的實(shí)驗來(lái)說(shuō)都非常關(guān)鍵。
下面即是手工細胞計數的基本流程、原理和意義:
1.計數前首先準備好細胞計數器(血球計數板):
使用70%乙醇將蓋玻片和細胞計數板清潔、晾干備用。
將晾干的蓋玻片輕輕覆蓋至血細胞計數器上。
(注:使用前須保證蓋玻片和計數板已充分晾干,否則將影響后續細胞充池及計數結果。)
2.制備細胞懸液:
對于貼壁生長(cháng)的細胞,我們需要首先使用胰酶消化的方法使細胞從培養皿表面脫落。(懸浮細胞則無(wú)需消化,稀釋到合適倍數即可。)
然后加入適當的含血清培養基,中和胰酶的作用并重懸細胞,以得到均質(zhì)的細胞懸液。要求盡可能將細胞吹散,不要殘留任何細胞團,但不可用力過(guò)大。
(注:消化太過(guò)或消化不全均會(huì )使計數結果產(chǎn)生偏差。)
臺盼蘭染色(可選):
如果需要計算細胞的活率,則需要將細胞懸液和0.4%臺盼蘭等體積混合;
室溫孵育3-5分鐘(懸浮細胞染色時(shí)間可視情況適當延長(cháng)),使臺盼蘭全部進(jìn)入死細胞,使死細胞著(zhù)藍色。
3.充池:即血細胞計數器加樣
使用吸管或移液器將細胞懸液或細胞/臺盼蘭混合液滴加到計數池的邊緣。此時(shí)液滴將在虹吸的作用下進(jìn)入蓋玻片下方的計數池,此即為充池。
(注:若需進(jìn)行多個(gè)樣品的計數,應盡量保證每次充池的體積一致,一般在10μl/池左右。)
以同樣的方式在另一側的計數池中也加入計數樣品。
將計數板靜置幾分鐘使細胞擴散、沉降。
4. 細胞計數:
在100倍顯微鏡下,移動(dòng)計數板將視野對準計數板的中央大方塊,該方塊四周有一圈3條平行線(xiàn)包圍,中間有密集的網(wǎng)格。中央方塊區差不多剛好可以填滿(mǎn)整個(gè)視野(圖1中標記的3號位置)。
圖1.細胞計數板圖解
分別計數大方格1.2.4.5中的細胞數。(為降低計數誤差,最好將細胞濃度調整為20-50個(gè)/大方格。)并重復記錄另一側計數池中的細胞數,總計8個(gè)大方塊,然后取均值。
計數原則為:“數上不數下,數左不數右"。(判斷標準為是否接觸三條邊線(xiàn)的中間線(xiàn),如圖2所示)。
圖2. 細胞計數原則
如果有多個(gè)細胞沒(méi)有吹散而成團存在,此時(shí)只可記為一個(gè)細胞。如果團塊很多,則需重新吹打甚至重新取樣消化直至絕大多數細胞為單個(gè)細胞。
5. 細胞濃度計算:
圖3. 樣品充池體積圖解
由圖3可以得出,每個(gè)大方格的容積為:
1 mm2×0.1 mm = 0.1 mm3 =10-4 cm3= 10-4 ml
即每個(gè)大方格的容積為萬(wàn)分之一毫升,因此在計算每毫升液體中的細胞數時(shí)需乘以104。
在常規沒(méi)有使用臺盼蘭染色時(shí),可以以下面公式計算每毫升樣品中細胞的個(gè)數:
每毫升樣品中細胞的個(gè)數 = 每個(gè)大方格內細胞的平均數 × 細胞稀釋倍數×104
如果使用了臺盼蘭染色,還需要計算活細胞的百分率:
活細胞百分率(%)= 臺盼蘭拒染細胞數/總細胞數×100
此時(shí)活細胞數的計算公式為:
每毫升樣品中活細胞的個(gè)數 = 每個(gè)大方格中細胞的平均數×活細胞比率×細胞稀釋倍數×2×104
注:乘2是由于在臺盼蘭染色時(shí),進(jìn)行了等體積混合,相當于稀釋了一倍。
看了以上步驟和原理,大家不禁會(huì )問(wèn):我們?yōu)槭裁匆獢导毎??細胞計數究竟有什么意義呢?其實(shí),當我們想了解細胞的生長(cháng)情況時(shí),除了直接觀(guān)察細胞形態(tài)以外,繪制細胞生長(cháng)曲線(xiàn)、計算細胞倍增時(shí)間應該就是廣泛采用的評價(jià)指標了。
所以盡管使用血細胞計數板手工計數細胞過(guò)程十分繁瑣,對實(shí)驗者操作者的要求也比較嚴格,現在也已有很多自動(dòng)化的細胞計數器/儀,但對于科學(xué)研究中遇到的各種細胞而言,手工計數仍然是易行的方法而被廣大實(shí)驗室采用。
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