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實(shí)驗原理
細胞克隆形成實(shí)驗是用來(lái)檢測細胞增殖能力、侵襲性、對殺傷因素敏感性等項目的重要技術(shù)方法。
當單個(gè)細胞在體外增殖6代以上,其后代所組成的細胞群體,成為集落或克隆。其中細胞克隆形成率即細胞接種存活率,表示接種細胞后貼壁的細胞成活并形成克隆的數量。
貼壁后的細胞不一定每個(gè)都能增殖和形成克隆,而形成克隆的細胞必為貼壁和有增殖活力的細胞。
克隆形成率反映細胞群體依賴(lài)性和增殖能力兩個(gè)重要性狀。
克隆形成的目的
1)通過(guò)對細胞處理后在細胞培養板上的克隆形成能力來(lái)提示處理后細胞的增殖能力。
2)評價(jià)不同殺傷因素(藥物、基因等)對腫瘤細胞增殖能力或群體依賴(lài)性的敏感性;
3)評價(jià)細胞在體內成瘤性,癌細胞不一定都可以在體內成瘤,但若體外克隆能力越強,即表明體內成瘤性越強,算是一種模擬體內成瘤的體外實(shí)驗。
克隆形成的分類(lèi)
克隆形成依據采用的培養介質(zhì)的不同,分為平板克隆和軟瓊脂克隆兩類(lèi)。
1. 平板克隆形成(Colony formation):細胞培養在培養基中,應用于貼壁的細胞。
2. 軟瓊脂克隆形成(soft agar colony formation):細胞被瓊脂糖掛起來(lái),主要應用于懸浮的腫瘤細胞和轉化細胞系。
下面我們就具體看一下這2種實(shí)驗技術(shù)的具體操作。
01平板克隆實(shí)驗過(guò)程
所需材料
基礎培養基(根據細胞選擇適用種類(lèi))
胎牛血清
胰蛋白酶
PBS
青霉素-鏈霉素溶液(100X)
多聚甲醛固定
結晶紫染液
Giemsa染液
實(shí)驗步驟
一、6孔板
1.將處于對數生長(cháng)期的細胞胰酶消化后,全部培養基(基礎培養基+10%胎牛血清)重懸成細胞懸液,并計數;
2.細胞接種:于6孔板培養板中各實(shí)驗組接種400-1,000個(gè)細胞/孔(根據細胞生長(cháng)情況確定,一般為700個(gè)細胞/孔);
3.繼續培養到14天或絕大多數單個(gè)克隆中細胞數大于50為止,中途每隔3天進(jìn)行換液并觀(guān)察細胞狀態(tài);
4.克隆完成后,在顯微鏡下對細胞進(jìn)行拍照,然后PBS洗滌1次,每孔加入1 mL 4%多聚甲醛固定30-60 min,PBS洗滌1次;
注意事項
1.每隔3天進(jìn)行換液,在換液時(shí),緩慢加入培養基,避免吹起細胞。
2.染色完成后,務(wù)必將染液清洗干凈,不要在孔中有殘留。
二、平皿
取對數生長(cháng)期的各組細胞,分別用0.25%胰蛋白酶消化并吹打成單個(gè)細胞,并把細胞懸浮在全部培養基(基礎培養基+10%胎牛血清)中備用。
將細胞懸液作梯度倍數稀釋?zhuān)拷M5個(gè)平行樣。每組細胞每皿分別接種100個(gè)細胞于含10ml 37℃預溫培養液的皿中,并輕輕轉動(dòng),使細胞分散均勻。
置37℃、5% CO2及飽和濕度的細胞培養箱中培養2~3周。
當培養皿中出現肉眼可見(jiàn)的克隆時(shí),終止培養。棄去上清液,用PBS小心浸洗2次。
加純甲醇或1:3醋酸/甲醇5ml,固定15分鐘。
去固定液,加適量Giemsa應用染色液染10~30分鐘
用流水緩慢洗去染色液,空氣干燥。
將平皿倒置并疊加一張帶網(wǎng)格的透明膠片,用肉眼直接計數克隆,或在顯微鏡(低倍鏡)計數大于10個(gè)細胞的克隆數。最后計算克隆形成率。
克隆形成率=(克隆數/接種細胞數)×100%
DU145細胞克隆形成的圖片(相機左,顯微鏡右)
注意事項
平板克隆形成實(shí)驗方法簡(jiǎn)單,適用于貼壁生長(cháng)的細胞。適宜底物為玻璃的、塑料瓶皿。
實(shí)驗成功的關(guān)鍵是細胞懸液的制備和接種密度。細胞一定要分散得好,不能有細胞團,接種密度不能過(guò)大。
數據分析
顯微鏡下觀(guān)察陽(yáng)性克隆,即每個(gè)克隆>50個(gè)細胞,相機拍照,數克隆數(大小約在0.3-1.0 mm)計算克隆形成率,并統計克隆大小。
例:如研究某個(gè)基因對細胞增殖的影響,敲低前列腺癌細胞株P(guān)C3的TCTN1基因,顯微鏡下拍照(Scale bar=250 μm)和相機拍照,克隆的大小和數量均受到抑制。
02軟瓊脂克隆形成
軟瓊脂克隆形成又名非錨定依賴(lài)性生長(cháng)實(shí)驗Anchorage-independent assay,利用軟瓊脂為培養介質(zhì),使細胞在懸浮狀態(tài)下生長(cháng)。
某些惡性腫瘤細胞,不僅在貼壁狀態(tài)下能增殖,在懸浮狀態(tài)下也能增殖,進(jìn)而通過(guò)軟瓊脂中形成克隆的能力反映了惡性程度,可用于細胞分化的基礎研究和臨床腫瘤治療的療效檢驗等方面。
1. 具體過(guò)程:如下圖所示
.配制1.2% 和0.7%瓊脂,高壓滅菌后,維持在42℃中使其不會(huì )凝固;
將1.2% 瓊脂與2×培養基混合,鋪入6孔板作為下層膠,每孔1.5ml,37°C孵育30 min使之凝固;
將制備好的單細胞懸液與0.7%瓊脂充分混勻,加入6孔板作為上層膠,每孔1.5ml。待其凝固后,再在上面加入培養基,每3天更換一次;
根據細胞的生長(cháng)速度培養2~3周后顯微鏡下觀(guān)察克隆大小,與平板克隆一樣,每個(gè)克隆>50個(gè)細胞,顯微鏡拍照。若拍整個(gè)孔,每孔加入200μl氯化硝基四氮唑藍(NBT)染色,37°C過(guò)夜,拍照。
2. 數據分析:顯微鏡或相機拍照,計算克隆形成率
例:通過(guò)軟瓊脂克隆形成實(shí)驗檢測ME2蛋白對神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞生長(cháng)的影響。在神經(jīng)膠質(zhì)瘤細胞GBM8401中將ME2蛋白敲低,形成的克隆數減少。
注意事項
1.上層軟瓊脂使細胞分散成單個(gè),下層軟瓊脂作為支撐防止細胞貼附生長(cháng)。最后鋪上一層培養基是為了防止膠干燥,并給細胞補充營(yíng)養,如果做藥物處理,則在培養基中加入藥物。
2.上層膠細胞數目根據不同的細胞類(lèi)型而定。一般以5000個(gè)細胞/孔作為起始濃度,根據需要調整。
3.瓊脂放入水浴鍋中維持在42℃左右。溫度過(guò)低瓊脂凝固,在做基底時(shí)瓊脂凝固過(guò)快會(huì )導致不均一,溫度過(guò)高則會(huì )將細胞燙死。此外,實(shí)驗過(guò)程中速度要快,防止局部結塊。
結語(yǔ)
2種細胞克隆方式,如何選擇?
根據實(shí)驗對象和目的選擇,平板克隆檢測貼壁腫瘤細胞的增殖能力和致瘤性,軟瓊脂克隆形成實(shí)驗除了檢測貼壁細胞,還能檢測懸浮腫瘤細胞和轉化細胞系,具有平板克隆不可取代的優(yōu)勢。若只是簡(jiǎn)單評價(jià)貼壁細胞的增殖能力和群體依賴(lài)性,則選擇平板克隆即可。
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